
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 623 |
تعداد مقالات | 6,501 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,619,549 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,210,417 |
پاسخ مورفوفیزیولوژیک گیاه Aeluropus littoralis به آلاینده Bisphenol A در همزیستی با قارچ مایکوریزا | ||
پژوهشهای تولید گیاهی | ||
مقاله 10، دوره 28، شماره 2، تیر 1400، صفحه 147-165 اصل مقاله (651.57 K) | ||
نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jopp.2021.18012.2674 | ||
نویسندگان | ||
میثم نژادصاحبی1؛ عزیز اله خندان میرکوهی* 2؛ محسن کافی3 | ||
1دانشجوی دکتری گروه علوم باغبانی و فضای سبز، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران | ||
2استادیار گروه علوم باغبانی و فضای سبز، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران، | ||
3استاد گروه علوم باغبانی و فضای سبز، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران | ||
چکیده | ||
چکیده: سابقه و هدف: آلوروپوس یکی از هالوفیتهای بومی ایران است که قابلیت جذب، انتقال و دفع نمک از طریق غدد نمکی را دارد. بیسفنول ای در پساب تصفیه خانه فاضلاب شهری و صنعتی، آب سطحی و زیرزمینی یافت می شود و به سبب فعالیت استروژنی موجب افزایش سرطان بیضه و سینه می گردد. گونه های چمنی به دلیل سیستم ریشه ای افشان برای انجام عمل گیاه پالایی خاکهای آلوده مناسب هستند. مواد و روش ها: این آزمایش با هدف بررسی پاسخ مورفوفیزیولوژیک گیاه علفی آلوروپوس بومی ایران به آلاینده بیسفنول ای در همزیستی با قارچ مایکوریزا به صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوک های کاملا تصادفی (48 واحد آزمایشی) انجام شد. تیمارها شامل چهار غلظت آلاینده بیسفنول ای (صفر، 5، 10و 15 میلی گرم در لیتر)، دو سطح تلقیح مایکوریزا (گیاهان بدون مایکوریزا و گیاهان تلقیح شده با مایکوریزا گلوموس موسه) و 3 تکرار (در هر تکرار 2 گیاه) بود. بذور در سینی های کشت با مخلوطی از ماسه، ورمی کولایت و خاک (1:1:1) کشت شدند. در مرحله بعدی گیاهچه ها برای انجام تیمارهای قارچ مایکوریزا به گلدان جدید (سطل4) انتقال داده شدند و همزمان ٥٠ گرم زادمایه مایکوریزا آربوسکولار به خاک هر گلدان اضافه شد. تیمارهای آلاینده بیسفنول ای به مدت دوماه توسط آب آبیاری انجام شد. یافته ها: نتایج نشان داد که تاثیر بیسفنول ای با توجه به غلظت متفاوت بود. سطح برگ، تعداد ساقه، تعداد برگ و ارتفاع در غلظت 5 میلی گرم در لیتر افزایش یافت و با افزایش غلظت به 15 میلی گرم در لیتر اثر کاهشی بر این صفات مشاهده شد. وزن خشک ریشه، سطح و حجم ریشه تا غلظت 10 میلی گرم در لیتر افزایش یافت. طول ریشه، غلظت کلروفیل، نشت یونی تا غلظت 5 میلی گرم در لیتر اختلاف معنی دار نداشت و در غلظت های بالاتر طول ریشه و غلظت کلروفیل کاهش و نشت یونی افزایش یافت. وزن تر ریشه و محتوای نسبی آب با افزایش غلظت آلاینده تا 10 میلی گرم در لیتر افزایش و در غلظت های ۱۰ و ۱۵ میلی گرم در لیتر کاهش یافت. با افزایش غلظت بیسفنول ای درصد جذب بیسفنول ای از خاک توسط گیاه کاهش و میزان بیسفنول ای تجمعی در برگ و ریشه افزایش نشان داد. با افزایش غلظت آلاینده تا سه برابر، بیسفنول ای برگی به میزان دو برابر افزایش یافت. تاثیر مایکوریزا بر کلیه صفات، به غیر از ارتفاع ساقه معنی دار شد به طوری که نشت یونی کاهش و بقیه صفات مورد ارزیابی در گیاهان تلقیح شده افزایش یافت. نتیجه گیری کلی: در گیاهان تلقیح شده با مایکوریزا، بیسفنول ای موجود در برگ و جذب بیسفنول از خاک بترتیب 30 و 40 درصد بیشتر از گیاهان بدون تلقیح بود که نشان می دهد قابلیت جذب بیسفنول ای در گیاهان تلقیح شده بالاتر است. گیاه آلوروپوس می تواند تا 80 درصد بیسفنول ای خاک را توسط سیستم ریشه ای خود جذب کند و با انتقال آنها به شاخساره، آلاینده را از طریق غدد نمکی خود دفع کند که نشان دهنده سازگاری و مقاومت بالای آلوروپوس نسبت به آلاینده بیسفنول ای است. | ||
کلیدواژهها | ||
هالوفیت؛ غدد نمکی؛ گیاه پالایی؛ نشت یونی؛ کلروفیل | ||
مراجع | ||
1.Aalipour, H., Nikbakht, A., Etemadi, N., Rejali, F. and Soleimani, M. 2019. Application of Pseudomonas flourescens bacteria and two species of AM fungi on the deficit tolerance seedlings of Arizona cypress (Cupressus arizonica G). J. Plant Proc. Func. 8: 32. 391-406.
2.Abbasi, F. 2008. The effects of salinity and aridity on some of the growth properties of Aeluropus logopoides and Aeluropus littoralis. J. Sci. (Islamic Azad University). 17: 121-138. (In Persian)
3.Abdelhafez, A.A. and Abdel-Monsief, R.A. 2006. Effects of VA mycorrhizal inoculation on growth, yield and nutrient content of cantaloupe and cucumber under different water regimes. Res. J. Agric. Biol. Sci. 2: 6. 503-508.
4.Abdelmoneim, T.S., Moussa, T.A.A., Almaghrabi, O.A., Alzahrani, H.S. and Abdelbagi, I. 2014. Increasing plant tolerance to drought stress by inoculation with arbuscular mycorrhizal fungi. Life Sci. 11: 6. 10-17.
5.Akhani, H. and Ghorbanli, M. 1999.A Contribution to the Halophytic Vegetation and Flora of Iran. P 35-44, In: H. Lieth and A. Al Masoom (eds), Towards the Rational Use of High Salinity Tolerant Plant. Springer, Dordrecht. 6.Ali, I., Liu, B., Farooq, M.A., Islam, F., Azizullah, A., Yu, C., Su, W. and Gan, Y. 2016. Toxicological effects of bisphenol A on growth and antioxidant defense system in Oryza sativa as revealed by ultrastructure analysis. Ecotoxicol. Environ. Saf. 124: 277-284.
7.Ali, T., Mahmood, S., Khan, M.Y., Aslam, A., Hussain, M.B. and Asghar, H.N. 2013. Phytoremediation of cadmium contaminated soil by auxin assisted bacterial inoculation. Asian J. Agric. Biol. 1: 2. 79-84.
8.Asrar, A.A., Abdel-Fattah, G.M. and Elhindi, K.M. 2012. Improving growth, flower yield, and water relations of snapdragon (Antirhinum majus L.) plants grown under well-watered and water-stress conditions using arbuscular mycorrhizal fungi. Photosynthetica J.50: 305-316.
9.Auge, R.M. 2001. Water relation drought and vesicular arbuscular mycorrhizal symbiosis. Mycorrhizae J. 11: 3-42.
10.Beiranvand, M., Rezaei Nejad, A.and Hosseini, S.Z. 2017. Effects oftwo mycorrhiza species (Glomus mosseae and G.interaradices) onsome morphological and physiological characteristics of Pelargonium graveolens L. under salinity stress. Ejgcst J.8: 1. 107-121.
11.Blum, A., Gozlan, G. and Mayer, J. 1981. The manifestation of dehydration avoidance in wheat breeding germplasm. Crop Sci. J. 21: 495-499.
12.Dashtebani, F., Hajiboland, N. and Aliasgharzad, N. 2017. Germination, photosynthesis and growth of two halophytic grass Puccinellia distans and Aeluropus littoralis under salinity and their colonization with mycorrhizal species in their natural habitatin the Tabriz plain. J. Plant Res.30: 4. 764-775.
13.Donson, J., Fang, Y., Espiritu-Santo, G., Xing, W., Salazar, A. and Miyamoto, S. 2002. Comprehensive gene expression analysis by transcript profiling. Plant Mol. Biol. 48: 75-97.
14.Esmaielpour, B., Jalilvand, P. and Hadian, J. 2013. Effects of drought stress and arbuscular mycorrhizal fungi on some morphophysiological trais and yield of savory (Satureja Hortensis L.). Agroecol. 5: 2. 169-177. (In Persian)
15.Ferrara, G., Loffredo, E. and Senesi, N. 2006. Phytotoxic, clastogenic and bioaccumulation effects of the environmental endocrine disruptor bisphenol A in various crops grown hydroponically. Planta. 223: 910-916.
16.González-Castro, M., Olea-Serrano, M., Rivas-Velasco, A., Medina-Rivero, E., Ordoñez-Acevedo, L.G. and Dek León-Rodríguez, A. 2011. Phthalates and bisphenols migration in Mexican food cans and plastic food containers. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 86: 6. 27-31.
17.Hiroshi, O., Kazunori, I., Hitoshi, M., Satoru, T., Takeshi, M., Hideki, N., Ko, K. and Kazumasa, H. 2010. Floricultural Salvia plants have a high ability to eliminate bisphenol A. J. Biosci. Bioeng. 110: 1. 99-101.
18.Hu, H., Wang, L., Wang, Q., Jiao, L., Hua, W., Zhou, Q. and Huang, X. 2014. Photosynthesis, chlorophyll fluorescence characteristics, and chlorophyll content of soybean seedlings under combined stress of bisphenol A and cadmium. Environ. Toxicol. Chem. 33: 2455-2462.
19.Imai, S., Shiraishi, A., Gamo, K., Watanabe, I., Okuhata, H., Miyasaka, H., Ikeda, K., Bamba, T. and Hirata, K. 2007. Removal of phenolic endocrine disruptors by Portulaca oleracea. J. Biosci. Bioeng. 103: 420-426.
20.Imran, A., Abdul, W., Sakila, U., Dongdong, L., Azizullah, A., Mehmood, J., Waheed, U., Bohan, L., Abid, A. and Yinbo, G. 2018. Effect of bisphenol A-induced oxidative Stress on the Ultra Structure and antioxidant defence system of Arabidopsis thialiana Leaves. J. Environ. Stud. 27: 3. 102-109.
21.James, B., Rodel, D., Lorettu, U., Reynaldo, E. and Tariq, H. 2008. Effect of vesicular arboscular mycorrhiza (VAM) fungi inoculation on coppicing ability and drought resistance ofSenna Spectabilis. Pak. J. Bot.40: 5. 2217-2224.
22.Jiao, L., Ding, H., Wang, L., Zhou, Q. and Huang, X. 2017. Bisphenol A effects on the chlorophyll contents in soybean at different growth stages. Environ. Pollut. 223. 426-434.
23.Kapoor, R. 2008. Induced resistance in mycorrhizal tomato is correlated to concentration of jasmonic acid. Online J. Biol. Sci. 8: 3. 49-56.
24.Kim, D., Kwak, J. and An, I. 2018. Effects of bisphenol A in soil on growth, photosynthesis activity, and genistein levels in crop plants (Vigna radiata). Chemosphere. 209: 875-882.
25.Kummerova, M., Krulova, J., Zezulka, S. and Triska, J. 2006. Evaluation of fluoranthene phytotoxicity in pea plants by Hill reaction and chlorophyll fluorescence. Chemosphere. 65: 489-496.
26.Li, X, Ying, G.G., Su, H.C., Yang,X.B. and Wang, L. 2010. Simultaneous determination and assessment of4-nonylphenol, bisphenol A and triclosan in tap water, bottled water and baby bottles. Environ. Int. 36: 5. 57-62.
27.Loffredo, E., Gattullo, C.E., Traversa, A. and Senesi, N. 2010. Potential of various herbaceous species to remove the endocrine disruptor bisphenol Afrom aqueous media. Chemosphere.80: 1274-1280.
28.Maleki, S., Aghayari, F., Ardakani, M. R. and Rejali, F. 2015. Evaluation of possibility improving growth and yield of lentil with use symbiosis mycorrhiza and azospirillum under rainfed condition. J. Agro. Plant Breed. 11: 3. 24-33. 29.Noureddin, I.M., Furumoto, T., Ishida, Y. and Fukui, H. 2004. Absorption and metabolism of bisphenol A, a possible endocrine disruptor, in the aquatic edible plant, water convolvulus (Ipomoea aquatica). Biosci. Biotechnol. Biochem. 68: 1398-1402.
30.Panwar, J.D.S. 1993. Response of VAM and Azospirillum inoculation to water status and grain yield in wheat under water stress conditions. Indian J. Plant Physiol. 36: 41-43.
31.Qiu, Z., Wang, L. and Zhou, Q.2013. Effects of bisphenol A ongrowth, photosynthesis and chlorophyll fluorescence in above-ground organsof soybean seedlings. Chemosphere.90: 1274-1280.
32.Rahimi, A., Dovlati, B., Amirnia, R. and Heydarzade, S. 2020. Effect of application of mycorrhizal fungus and Azotobacter on physiological characteristics of Trigonella foenum-graecum L. under water stress conditions. Iran. J. Plant Biol.11: 4. 47-55. (In Persian) 33.Rousseau, J.D. and Reid, C.P. 1991. Effects of phosphorus fertilization and mycorrhizal development on phosphorus nutrition and carbon balance of loblolly pine. New Phytologist. 117: 319-326.
34.Saiyooda, S., Vangnaib, A.S., Thiravetyand, C.P. and Inthorna, D. 2010. Bisphenol A removal by the Dracaena plant and the role of plant-associating bacteria. J. Hazard. Mater. 178: 777-785.
35.Salazar-Parra, C., Aranjuelo, I., Pascual, I., Erice, G., Sanz-S_aez, A., Aguirreolea, J., Sanchez-Díaz, M., Irigoyen, J.J., Araus, J.L. and Morales, F. 2015. Carbon balance, partitioning and photosynthetic acclimation in fruit bearing grapevine (Vitis vinifera L. cv. Tempranillo) grown under simulated climate change (elevated CO2, elevated temperature and moderate drought) scenarios in temperature gradient gre.J. Plant Physiol. 174: 97-109.
36.Sekozawa, Y., Sugaya, S., Gemma, H. and Iwahori, S. 2003. Cold tolerance in ‘Kousui’ Japanese pear and possibility for avoiding frost injury by treatment whith n-propyl dihydrojasmonate. Hort. Sci. 38: 288-292.
37.Sensoy, S., Demir, S., Turkmen, O., Erdinc, C., Burak and Savur, O. 2007. Responses of some different pepper (Capsicum annum L.) genotypes to inoculation with two different arbuscular mycorrhizal fungi. Scientia Horticulturae. 113: 92-95.
38.Sherwin, H.W. and Farrant, J.M.1998. Protection mechanisms against excess light in the resurrectionplants Craterostigma wilmsii and Xerophyta viscosa. Plant Growth. Regul. 24: 203-210.
39.Smith, S.E. and Read, D. 2008. Mycorrhizal Symbiosis. 3rd edition, Acedemic Press, London, 800p.
40.Song, H. 2005. Effects of VAM on host plant in the condition of drought stress and its Mechanisms. Elec. J. Biol. 1: 3. 44-48. 41.Speranza, A., Crosti, P., Malerba, M., Stocchi, O. and Scoccianti, V. 2011. The environmental endocrine disruptor, bisphenol A, affects germination, elicits stress response and alters steroid hormone production in kiwifruit pollen. Plant Biol. 13: 209-217.
42.Staples, C., Friederich, U., Hall, T., Kleka, G., Mihaich, E., Ortego, L., Caspers, N. and Hentges, S. 2010. Estimating potential risks to terrestrial invertebrates and plants exposed to bisphenol A in soil amended with activated sludge biosolids. Environ. Toxicol. Chem. 29: 467-475.
43.Sun, W., Ni, J., O’Brien, K., Hao, P. and Sun, L. 2005. Adsorption of bisphenol A on sediments in the Yellow River. Water Air Soil Pollut. 167: 3. 53-64. 44.Sun, H., Wang, L.H., Zhou, Q. and Huang, X.H. 2013. Effects of bisphenol A on ammonium assimilation in soybean roots. Environ. Sci. Pollut. R. 20: 8484-8490.
45.Takahashi, M., Tsukamoto, S., Kawaguchi, A., Sakamoto, A. and Morikawa, H. 2005. Phytoremediators from abandoned rice field, Plant Biotechnol. 22: 167-170.
46.Terouchi, N., Takano, K., Nakamura, Y., Enomoto, K., Hosoya, N. and Nishinari, N. 2004. Bisphenol A stimulates growth and shoot differentiation in plants. Plant Biotechnol. 24: 2. 114-122.
47.Turner, N.C. 1981. Techniques and experimental approaches for the measurement of plant water status. Plant and Soil. 58: 339-366. 48.Wang, S., Wang, L., Hua, W., Zhou, M., Wang, Q., Zhou, Q. and Huang, X. 2015. Effects of bisphenol A, an environmental endocrine disruptor, on the endogenous hormones of plants. Environ. Sci. Pollut. Res. 22: 17653-17662.
49.Wen-Juan, P.A., Can, X., Qiu-Ping, W., Jin-Xia, L., Hong-Mei, L., Wei Chen, A., Yong-Sheng, L. and Lei, Z. 2013. Effect of BPA on the germination, root development, seedling growth and leaf differentiation under different light conditions in Arabidopsis thaliana. Chemosphere. 93: 2585-2592.
50.Wu, Q.S., Xia, R.X., Zou, Y.N. and Wang, G.Y. 2007. Osmotic solute responses of mycorrhizal citrus (Poncitrus trifoliate) seedlings to drought stress. Acta physiologica Plantarum. 29: 543-549.
51.Zhang, Q., Wang, F., Xue, C., Wang, C., Chi, S. and Zhang, J. 2016. Comparative toxicity of nonylphenol, nonylphenol- 4-ethoxylate and nonylphenol-10-ethoxylate to wheat seedlings (Triticum aestivum L.). Ecotoxicol. Environ. Saf. 131: 7-13. 52.Zhiyong, Q., Lihong, W. and Qing, Z. 2013. Effects of bisphenol A ongrowth, photosynthesis and chlorophyll fluorescence in above-ground organsof soybean seedlings. Chemosphere.90: 3. 1274-1280.
53.Zouari, N., Ben Saad, R., Legavreb, T., Azazaa, J., Sabau, X., Jaouaa, M., Masmoudia, K. and Hassairia, A. 2007. Identification and sequencing of ESTs from the halophyte grass Aeluropus littoralis. Plant. Mol. Gen. 2: 103-106. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 376 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 216 |