
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 623 |
تعداد مقالات | 6,502 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,649,986 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,255,949 |
سلول های بنیادی عصبی مغز ماهی قره برون (Acipenser persicus): تعیین درجه حرارت بهینه، کشت طولانی مدت و ایمنوسیتوشیمی | ||
مجله بهره برداری و پرورش آبزیان | ||
مقاله 2، دوره 7، شماره 4، اسفند 1397، صفحه 9-19 اصل مقاله (505.72 K) | ||
نوع مقاله: مقاله کامل علمی - پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/japu.2019.6859.1221 | ||
نویسندگان | ||
حدیثه کشیری* 1؛ علی شعبانی2؛ کامران حیدری3؛ محمدرضا ایمانپور2؛ محسن سعیدی3 | ||
1استادیار گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان | ||
2دانشیار گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان | ||
3استادیار دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گرگان | ||
چکیده | ||
کشت سلولی مغز ماهیان دارای پتانسیل بالایی در بررسی واکنشهای مختلف به مواد سمی، نوترینتها و عوامل رشد میباشند. در این تحقیق، به منظور بررسی امکان تهیه کشت طولانی مدت از مغز تاس ماهی ایرانی، شناسایی سلول های بنیادی عصبی و تعیین درجه حرارت بهینه رشد سلول ها، بخشهای جلویی (لوب بویایی)، میانی (لوب بینایی) و عقبی (مخچه) مغز تاس ماهی ایرانی به طور مجزا در محیط DMEM/F12 حاوی FBS٪۱۵، پنی سیلین-استرپتومایسین و آمفوتریسین در انکوباتور (۲۵ درجه سانتی-گراد، CO2٪۵) قرار داده شدند. سلولهای بهدست آمده غالبا دوکی شکل بودند. در بین سلولهای کشت داده شده از بخشهای مختلف مغز، سلولهای بخش عقبی مغز پس از طی بیش از ۸ ماه و ۹ پاساژ همچنان به رشد و تکثیر خود ادامه میدهند. به منظور تعیین درجه حرارت بهینه رشد سلولهای مغز تاس ماهی ایرانی، سلولها در درجه حرارتهای ۲۰، ۲۲، ۲۵ و ۲۸ درجه سانتیگراد قرار گرفته و تعداد سلول ها در هر تیمار دمایی جهت ارزیابی شرایط رشد بررسی گردید. بالاترین رشد سلولها در شرایط آزمایشگاهی در درجه حرارت ۲۵ درجه سانتیگراد مشاهده گردید. به منظور حفظ ذخیره سلولی، کشتهای بهدست آمده در ازت مایع منجمد شدند. بهمنظور شناسایی سلولهای بنیادی عصبی، واکنش پذیری سلولهای حاصل از کشت بخش عقبی مغز با مارکر آنتی نستین بررسی گردید که در این میان، ٪۱۱ سلولها واکنش مثبت نشان دادند. با توجه به پایداری بالای کشت های به دست آمده از ناحیه عقبی مغز، می توان از آن در زمینه های تحقیقاتی مختلف همچون شناسایی ویروس، اکوتوکسکولوژی و بیان ژن استفاده نمود. | ||
کلیدواژهها | ||
آمفوتریسین؛ پاساژ؛ درجه حرارت بهینه؛ ماهی قره برون | ||
سایر فایل های مرتبط با مقاله
|
||
مراجع | ||
Alexander, K., Yang, H.S., and Hinds, P.W. 2004. Cellular senescence requires CDK5 repression of Rac1 activity. Molecular Cell Biology, 24: 2808–2819. Bani, A., Zadbagher, F., and Jadidi, N. 2008. Brain morphology in Acipenser stellatus and Acipenser persicus brain morphology, in persian, Iranian Journal of Biology, 21(2): 341-350. Bols, N.C., Dayeh, V.R., Lee, L.E.J., and Schirmer, K. 2005. Use of fish cell lines in the toxicology and ecotoxicology of fish, Piscine cell lines in environmental toxicology, Enviromental toxicology, 6: 43-84. Bols, N.C., and Lee, L.E.J. 1991. Technology and uses of cell cultures from the tissues and organs of bony fish, Cyto technology, 6: 163-187. Chi, S.C., Wu, Y.C., and Cheng, T.M. 2005. Persistent infection of betanodavirus in a novel cell line derived from the brain tissue of barramundi Lates calcalifer, Disease of aquatic organisms, 65(2): 91-98. Grandel, H., Kaslin, J., Ganz, J., Wenzel, I., and Brand, M. 2006. Neural stem cells and neurogenesis in the adult zebrafish brain: origin, proliferation dynamics, migration and cell fate, Development Biology, 295(1): 263–277.
Gregg, C.T., Chojnacki, A.K.,and Weiss, S. 2002. Radial glial cellsas neural precursors: the next generation, Journal of neuroscience research, 69(6): 708-713. Grunow, B., Noglick, C., Kruse, C., and Gebert, M. 2011. Isolation of cells from Atlantic sturgeon Acipenser oxyrinchus and optimization of culture conditions, Aquatic Biology, 14: 67-75. Hinsch, K., and Zupanc, G.K. 2006. Isolation, cultivation, and differentiation of neural stem cells from adult fish brain, Journal of Neuroscience Methods, 158: 75–88.
Kaslin, J., Ganz, J., and Brand, M. 2008. Proliferation, neurogenesis and regeneration in the non-mammalian vertebrate brain, Philos. Trans. R. Soc. Lond., B Biology Science, 363(1489): 101–122.
Khabbaz, M., Shirazi, S.H., Eric Aghaji, H., and Khabaz, M. 2008. Investigation of economic importance of Persian sturgeon and it,s conservations strategies in Iranian waters, In Persian, 11th Iraniam veterinary congress, Tehran, Iranian veterinary society, http://www.civilica.com/Paper-THVC15-THVC15_249.html.
Lakra, W.S., Swaminathan, T.R., and Joy, K.P. 2011. Development, characterization, conservation and storage of fish cell lines: a review, Fish physiology and biochemistry, 37(1): 1-20.
Moles, G., Carrillo, M., Mañanos, E., Mylonas C.C., and Zanuy, S. 2007. Temporal profile of brain and pituitary GnRHs, GnRH-R and gonadotropin mRNA expression and content during early development in European sea bass (Dicentrarchus labrax L[p1] .), Gene Comparative Endocrinology, 150(1): 75–86. Neuhaus, J., and Fedoroff, S. 1994. Development of microglia in mouse neopallial cell cultures, Glia, 11(1): 11-17.
Ott, T. 2004. Tissue culture of fish cell lines; National wildlife fish health survey laboratory procedures and protocols, 2th edition, US fish and wildlife service: Washington DC, p: 1-16.
Parameswaran, V., Shukla, R., Bhonde, R.R., and Sahul Hameed, A.S. 2006. Splenic cell line from sea bass, Lates calcalifer[p2] : establishment and characterization, Aquaculture, 261: 43-53. Pitchford, S., De Moor, K., and Glaeser, B.S. 1995. Nerve growth factor stimulates rapid metabolic responses in PC12 cells, American Journal of physiology, 268: 936-943.
Saha, K., Keung, A., Irwin, E., Li, Y., Little, L., Schaffer, D., and Healy, K.E. 2008. Substrate modulus directs neural stem cell behavior, Biophysics Journal. 95: 4426-4438.
Rizk, T., Montero-Menei, C., Jollivet, C., Benoit, J.P., and Menei, P. 2004. Pitfalls in the detection of lipid vectors in neural cell culture and in brain tissue, Journal of biomedical materials research, 68(2): 360-364.
Servilia, A., Bufalinoa, M.R., Nishikawac, R., Sanchez de Melod, I., Munoz-Cuetob, J., and Lea, L. 2008. Establishment of long term cultures of neural stem cells from adult sea bass, Dicentrarchus labrax, Comparative biochemistry and physiology Part A: Molecular and integrative physiology, 62(3): 32-36.
Tang, H.W., Yan, H.L., Hu, X.H., Liang, Y.X., and Shen, X.Y. 1996. Lead cytotoxicity in primary cultured rat astrocytes and Schwann cells, Journal of applied toxicology, 16(3): 187-196.
Veronesi, B. 1992. In vitro screening batteries for neurotoxicants, Neurotoxicology, 13(1): 185-195.
Wen, C.M., Cheng, Y.H., Huang, Y.F., and Wang, C.S. 2008. Isolation and characterization of a neural progenitor cell line from tilapia brain, Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular and integrative Physiology, 149(2): 167-180.
Yang, H.Y., Lieska, N., Shao, D., Kriho, V., and Pappas, G.D. 1993. Immunotyping of radial glia and their glia derivatives during development of the rat spinal cord, Journal of neurocytology, 22(7): 558-571.
Zupanc, G.K., and Clint, S.C. 2003. Potential role of radial glia in adult neurogenesis of teleost fish, Glia, 43(1): 77–86. Zupanc, G.K., and Horschke, I. 1995. Proliferation zones in the brain of adult gymnotiform fish: a quantitative mapping study, Journal of Comparative Neurology, 353(2): 213–233.
Zupanc, G.K., and Ott, R. 1999. Cell proliferation after lesions in the cerebellum of adult teleost fish: time course, origin, and type of new cells produced, Experimental Neurology, 160(1): 78–87.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 387 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 348 |