
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 623 |
تعداد مقالات | 6,501 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,629,192 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,223,722 |
همزیستی قارچهای میکوریز اربوسکولار با درختان پده (.Populus euphratica Oliv) در جنگلهای کنار رودخانهای و ارتباط آن با خصوصیات فیزیکوشیمیایی خاک | ||
پژوهشهای علوم و فناوری چوب و جنگل | ||
مقاله 2، دوره 24، شماره 1، خرداد 1396، صفحه 17-28 اصل مقاله (458.24 K) | ||
نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jwfst.2017.11361.1597 | ||
نویسندگان | ||
ساره مرادی بهبهانی1؛ مصطفی مرادی* 2؛ رضا بصیری3؛ جواد میرزایی4 | ||
1دانشجوی ارشناسی ارشد گروه جنگلداری، دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا< بههبان | ||
2هیات علمی دانشگاه صنعتی خاتم الانبیاء بهبهان | ||
3هیات علمی گروه جنکلداری، دانشگاه صنعتی خاتم الانبیاء بهبهان | ||
4هیات علمی گروه علوم جنگل، دانشگاه ایلام | ||
چکیده | ||
سابقه و هدف: جنگلهای کنار رودخانهای یکی از اکوسیستمهای جنگلی منحصر به فردی است که اطلاعات کمی در رابطه با آنها وجود دارد. این جنگلها که نقش مهمی در اکوسیستم رودخانه دارند امروزه در معرض خطر نابودی قرار گرفتهاند. یکی از شایعترین گونههای موجود در این جنگلها، گونه پده (Populus euphratica) میباشد. این گونه در حاشیه رودخانهها پراکنش داشته و بومی مناطق خشک و نیمه خشک است. با توجه به اینکه اطلاعات چندانی در رابطه با وضعیت همزیستی قارچهای میکوریز با درختان پده در کشور در دست نیست در این مطالعه همزیستی قارچهای میکوریز آربوسکولار با پده مورد بررسی قرار گرفته و اثر دوری و نزدیکی به رودخانه در آغشتگی، اسپورزایی این قارچها ارزیابی شده است. همچنین به منظور تعیین موثرترین متغیرهای خاکی مورد مطالعه با میزان آغشتگی و تراکم اسپور، همبستگی بین این متغیرها تعیین شده است. مواد و روشها: در این مطالعه عرض جنگل کنار رودخانه مارون که 400 متر میباشد، به سه منطقه با فاصله 200 متری تقسیم شد. این فاصلهها شامل: حاشیه رودخانه (فاصله 1)، منطقه بینابینی (فاصله 2) و منطقه 3 بودند. در هر کدام از این فاصلهها 10 نمونه از خاک ریزوسفر پده جمع آوری شد. برای هر نمونه نیز ریشههای مویین جمع آوری شد و میزان آغشتگی قارچها و اسپورزایی برای نمونهها مشخص گردید. همچنین خصوصیات فیزیکی و شیمیایی خاک مربوط به هرکدام از این نمونهها در فواصل مورد مطالعه نیز محاسبه شد. یافتهها: نتایج این پژوهش مشخص کرد که کمترین میزان آغشتگی ریشه در فاصله دوم (منطقه بینابینی) وجود دارد که دارای اختلاف معنی-داری با دو فاصله دیگر بود. همچنین، اگرچه بین تراکم اسپور در فاصلههای مورد بررسی اختلاف معنی داری مشاهده نشد اما بیشترین تراکم در فاصله سوم مشاهده شد. از بین خصوصیات فیزیکی و شیمایی خاک، میزان فسفر، شن و رس خاک تفاوت معنیداری در مناطق مورد بررسی داشتند ولی دیگر خصوصیات مورد بررسی تفاوت معنی داری را نشان ندادند. همچنین هیچ همبستگی معنی داری بین میزان آغشتگی و اسپورزایی با متغیرهای مورد بررسی مشاهده نشد ولی همبستگی معنی داری بین رس و سیلت با فسفر خاک مشاهده شد. نتیجهگیری: با توجه به میزان آغشتگی بالای ریشه و همچنین تراکم اسپور بالا در ریزوسفر پده، میتوان این گونه عنوان نمود که پده دارای همزیستی بالایی با قارچهای میکوریز بوده که میتوان از این همزیستی به عنوان راهکاری برای احیا و توسعه جنگلهای پده استفاده نمود. همچنین فاصله از رودخانه میتواند به عنوان یک عامل موثر در میزان همزیستی قارچهای میکوریز و درختان پده در جنگلهای کناررودخانهای باشد. | ||
کلیدواژهها | ||
آغشتگی؛ پده؛ قارچ؛ ریزوسفر؛ میکوریز | ||
مراجع | ||
1. Al-Karaki, G., McMichael, B., and Zak, J. 2004. Field response of wheat to arbuscular mycorrhizal fungi and drought stress. Mycorrhiza. 14: 4. 263-369. 2. Barea, J.M., Palenzuela, J., Cornejo, P., Sánchez-Castro, I., Navarro-Fernández, C., Lopéz- García, A., Estrada, B., Azcon, R., Ferrol, N., and Azcon-Aguilar, C. 2011. Ecological and functional roles of mycorrhizas in semi-arid ecosystems of Southeast Spain. Journal of Arid Environments. 75: 1292–1301. 3. Biermann, B., and Linderman, R.G. 1981. Quantifying vesicular-arbuscular mycorrhizae: Proposed method towards standardization. New Phytologist. 87: 63-67. 4. Bremner, J.M., and Mulvaney, C.S. 1982. Nitrogen total. In: Miller RH, Kieney DR (eds) Method of soil analysis- part 2: chemical and microbiological methods, 2nd edn. Agronomy series No. 9. American Society for Agronomy and Soil Sciences, Madison, Pp: 595–624. 5. Coroi, M., Skeffington, M.S., Giller, P., Smith, C., Gormally, M., and O’donovan, G. 2004. Vegetation Diversity and Stand Structure in Streamside Forests in The South Of Ireland. Forest Ecology and Management. 202: 1. 39-57. 6. Egerton-Warburton, L.M., and Allen, E.B. 2000. Shifts in arbuscular mycorrhizal communities along an anthropogenic nitrogen deposition gradient. Ecological Applications. 10: 484–496. 7. Finlay, R.D. 2008. Ecological aspects of mycorrhizal symbiosis: with special emphasis on the functional diversity of interactions involving the extraradical mycelium. Journal of Experimental Botany. 59: 1115–1126. 8. Gai, J.P., Tian, H., Yang, F.Y., Christie, P., Li, X.L., Klironomos, J.N. 2012. Arbuscular mycorrhizal fungal diversity along a Tibetan elevation gradient. Pedobiologia. 55: 145–151. 9. Gerdemann, J.W., and Nicloson, T.H. 1963. Spores of mycorrhizal Endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Trans. British Mycological Society. 46: 235-238. 10. Giglouei, A.A.F., Forghani, A., Kahneh, E., and Karimi, Gh.H. 2008. The arbuscular mycorrhizal fungi status of some poplar clones in Guilan. Iranian Journal of Biology. 21: 2. 278-288. (In Persian) 11. Hodge, A., Campbell, C.D., and Fitter, A.H. 2001. An arbuscular mycorrhizal fungus accelerates decomposition and acquires nitrogen directly from organic material. Nature. 413: 297–299. 12. Hodge, A., and Fitter, A.H. 2010. Substantial nitrogen acquisition by arbuscular mycorrhizal fungi from organic material has implications for N cycling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107. 31. 13754–13759. 13. Kivlin, S.N., Hawkes, C.V., and Treseder, K.K. 2011. Global diversity and distribution of arbuscular mycorrhizal fungi. Soil Biology and Biochemistry. 43: 2294–2303. 14. Li, L.F., Yang, A.N., and Zhao, Z.W. 2005. Seasonality of arbuscular mycorrhizal symbiosis and dark septate endophytes in a grassland site in southwest China. FEMS Microbiology Ecology. 54: 367–373. 15. Martinez-Salgado, M.M., Gutiérrez-Romero, V., Jannsens, M., and Ortega-Blu, R. 2010. Biological soil quality indicators: review. Current Research, Technology and Education Topics in Applied Microbiology and Microbial Biotechnology. 319-328. 16. Matevž, L., Katarina, H., Tomislav, R., and Marjana, R. 2013. Distribution and diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in grapevines from production vineyards along the eastern Adriatic coast. Mycorrhiza. 23: 209–219. 17. Mendoza, R.E., Goldmann, V., Rivas, J., Escudero, V., Pagani, E., Collantes, M.B., and Marbán, L. 2002. Arbuscular mycorrhizal fungi populations in relationship with soil properties and host plant in grasslands of Tierra del Fuego. Austral Ecology., 12: 105–116. 18. Minggui, G., Ming, T., Qiaoming, Z., and Xinxin, F. 2012. Effects of climatic and edaphic factors on arbuscular mycorrhizal fungi in the rhizosphere of Hippophae rhamnoidesin the Loess Plateau, China. Acta Ecologica Sinica. 32: 62–67. 19. Moradi, M., Shirvany, A., Matinizadeh, M., Etemad, V., Naji, H.R., Abdul-Hamid, H., Sayah, S. 2014. Arbuscular mycorrhizal fungal symbiosis with Sorbus torminalis does not vary with soil nutrients and enzyme activities across different sites. iForest. 8. 3. 308–313. 20. Morwin, H.D., and Peach, P.M. 1951. Exchangeability of soil potassium in and, silt and clay fractions as influenced by the nature of complementary exchangeable cations. Soil Science Society of America Journal, 15: 125-128. 21. Muthukumar, T., Sha, L.Q., Yang, X.D., Cao, M., Tang, J.W., and Zheng, Z. 2003. Distribution of roots and arbuscular mycorrhizal associations in tropical forest types of Xishuangbanna, southwest China. Applied Soil Ecology. 22: 241–253. 22. Olsen, S.R., Cole, C.V., Watanabe, F.S., and Dean, L.A. 1954. Estimation of available phosphorus in soils by extraction with sodium bicarbonate, USDA Circular. 939: 1-19. 23. Parniske, M. 2008. Arbuscular mycorrhiza: the mother of plant root endosymbioses. Nature Reviews Microbiology. 6: 763–775. 24. Peter, D.S., Williams, S.E., and Martha, C. 1988. Efficacy of native vesicular–arbuscular mycorrhizal fungi after severe soil disturbance. New Phytologist. 110: 347–54. 25. Petts, G., and Amoros, C. 1996. Fluvial Hydrosystems: a manage-ment perspective. Pp: 263– 278. In: Petts, G., and Amoros, C. (eds), Fluvial hydrosystems. Chapman and Hall, London, 1-2. 26. Phillips, J.M., and Hayman, D.S. 1970. Improved procedures for clearing and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society. 55: 158–161. 27. Redecker, D., Kodner, R., and Graham, L.E. 2000. Glomalean fungi from the Ordovician. Science. 289: 1920–1921. 28. Roda, J.J., Diaz, G., and Torres, P. 2008. Spatial distribution of arbuscular mycorrhizal fungi in the rhizosphere of the salt marsh plant Inula crithmoides L. along a salinity gradient. Arid Land Research and Management. 22: 310–319. 29. Rodriguez-Echeverria, S., Gera, H., W.H., Freitas H., Easonc W.R., and Cook, R. 2008. Arbuscular mycorrhizal fungi of Ammophila arenaria (L.) Link: Spore abundance and root colonisation in six locations of the European coast. European Journal of Soil Biology. 44: 30–36. 30. Sabeti, H. 1976. Forests, Trees and Shrubs of Iran. Ministry of Agriculture and Natural Resources of Iran, Tehran. 810p. (In Persian) 31. Salajegheh Tezrji, F., Sarcheshmehpour, M., and Mohammadi, H. 2014. Investigation of mycorrhizal colonization of Pistachio (Pistacia vera) seedlings in Kerman province and evaluation of some isolates via greenhouse experiment. Journal of Soil Management and Sustainable Production. 4. 3. 113-130. (In Persian) 32. Samadi, A. 2006. Phosphorus Sorption Characteristics in Relation to Soil Properties in Some Calcareous Soils of Western Azarbaijan Province. Journal of Agricultural Science and Technology. 8: 251-264. 33. Smith, S.E., and Read, D.J. 2008. Mycorrhizal Symbiosis. Academic Press Inc., London, UK. 815p. 34. Thonar, C., Schnepf, A., Frossard, E., Roose, T., and Jansa, J. 2011. Traits related to differences in function among three arbuscular mycorrhizal fungi. Plant and Soil. 339: 231– 245. 35. Tockner, K., and Stanford, J.A. 2002. Riverine flood plains: Present state and future trends. Environmental Conservation. 29: 3. 308-330. 36. Treseder, K.K. 2004. A meta-analysis of mycorrhizal responses to nitrogen, phosphorus and atmospheric CO2 in field studies. New Phytologist. 164: 347-365. 37. Walkley, A., and Black, I.A. 1934. An examination of Degtjareff method for determining soil organic matter and a proposed modification of the chromic acid titration method. Soil Science. 37: 29-37. 38. Waltert, B., Wiemken, V., Rusterholz, H.P., Boller, T., and Baur, B. 2002. Disturbance of forest by trampling: Effects on mycorrhizal roots of seedlings and mature trees of Fagus sylvatica. Plant and Soil. 243: 143–154. 39. Wang, S.J., Chen, B.H., and Li, H.Q. 1995. Euphrates poplar forest. China Environmental Science. 12-16. 40. Yang, A.N., Lu, L., and Zhang, N. 2011. The diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in the subtropical forest of Huangshan (Yellow Mountain), East-Central China. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 27: 2351-2358. 41. Yang, Y., Chen, Y., and Li, W. 2008. Arbuscular mycorrhizal fungi infection in desert riparian forest and its environmental implications: A case study in the lower reach of Tarim River. Progress in Natural Science. 18: 983–991. 42. Yoshimura, Y., Ido, A., Iwase, K., Matsumoto, T., and Yamato, M. 2013. Communities of Arbuscular Mycorrhizal Fungi in the Roots of Pyrus pyrifolia var. culta (Ja panese Pear) in Orchards with Variable Amounts of Soil-Available Phosphorus. Microbes and Environments. 28: 1. 105–111. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 885 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 526 |