
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 623 |
تعداد مقالات | 6,502 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,647,492 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,248,452 |
تاثیر اکسینهای IBA، NAA و 2, 4- D بر تولید و رشد کالوس در گونه سرخدار (Taxus baccata L.) در شرایط درون شیشهای | ||
پژوهشهای علوم و فناوری چوب و جنگل | ||
مقاله 1، دوره 24، شماره 1، خرداد 1396، صفحه 1-16 اصل مقاله (302.38 K) | ||
نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jwfst.2017.10789.1562 | ||
نویسندگان | ||
سید علی رضوی* 1؛ سید محمد حسینی نصر2؛ فرامرز رستمی چراتی3؛ حسن رضادوست4 | ||
1عضو هیات علمی، دانشگاه گنبد کاووس | ||
2عضو هیات علمی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری | ||
3عضو هیات علمی دانشگاه گنبد کاووس | ||
4عضو هیات علمی پژوهشکده گیاهان و مواد اولیه دارویی، دانشگاه شهید بهشتی تهران | ||
چکیده | ||
سابقه و هدف: سرخدار یکی از با ارزشترین گونههای سوزنیبرگ جنگلهای شمال ایران است که گونهای سایهپسند بوده و از آستارا تا علیآباد کتول استان گلستان پراکنش دارد. این گونه ضمن داشتن ارزش فراوان از نظر ذخایر ژنتیکی، جنگلشناسی و اکولوژیکی، در صنعت دارویی نیز جایگاه ویژهای دارد. از آنجائیکه کالوس به عنوان ماده اولیه برای کشتهای سلولی و تولید متابولیتهای ثانویه و نیز تولید گیاهچه به روش غیرمستقیم ضروری میباشد، لذا به منظور پیشنهاد ریزنمونه مناسب و غلظت معینی از تنظیمکنندههای رشد جهت تولید کالوس، تأثیر اکسینهای ایندول بوتریک اسید (IBA)، نفالین استیک اسید (NAA) و 2و 4 دیکلروفنوکسی استیک اسید (2, 4- D) بر میزان تولید و رشد کالوس سرخدار در شرایط درون شیشهای مورد بررسی قرار گرفت. مواد و روشها: در این پژوهش از قسمتهای مختلف درخت نظیر برگ، ساقههای جوان و جوانههای رویشی ریز نمونههایی به طول 5/1 سانتیمتر تهیه شد. برای سترونسازی ریزنمونهها از روشهای مختلفی استفاده شد. ریزنمونهها پس از سترونسازی در محیط کشت موراشیگ و اسکوگ (MS) کشت شدند. جهت القاء کالوس از هورمونهای IBA، NAA و 2,4- D در چهار سطوح 0، 3/0، 3 و 6 میلیگرم در لیتر استفاده شد. به منظور جلوگیری از تجزیه اکسینها و جذب بهتر آنها توسط بافت ریزنمونه، کلیه ریزنمونهها به مدت یک هفته در شرایط تاریکی نگه داشته شدند. برای هر یک از ریزنمونههای ساقه، برگ و جوانه منحنی رشد کالوس ترسیم گردید. تجزیه و تحلیل دادهها توسط آزمون تجزیه واریانس و آزمون دانکن انجام شد. یافتهها: نتایج پژوهش نشان داد که بهترین روش برای سترونسازی ریزنمونهها استفاده از اتانول 70 درصد (1 دقیقه) و کلرید جیوه 2/0 درصد و کلرور کلسیم 2/0 درصد (1 دقیقه) میباشد. بیشترین درصد قهوهای شدن به ریزنمونههای جوانه در غلظت 6 میلیگرم در لیتر NAA تعلق داشت. ریزنمونههای برگ از نظر پدیده قهوهای شدن از وضعیت بهتری برخوردار بودند، بطوریکه در غلظتهای مختلف IBA و 2, 4- D هیچگونه آثار قهوهای شدن مشاهده نشد. بیشترین وزن تر و خشک کالوس به ریزنمونههای ساقه و جوانه تعلق داشت که به ترتیب تحت تیمار هورمونهای 2, 4- D و NAA با غلظت 3 میلیگرم در لیتر بودند. ضمناینکه کالوسهای تولید شده دارای بافت و رنگ متفاوتی بودند. بیشتر ریزنمونههای جوانه در غلظت 3/0 میلیگرم در لیتر NAA وضعیت طبیعی خود را حفظ کرده ولی عمده جوانهها در غلظت 6 میلیگرم در لیتر IBA و 2, 4- D به کالوس تبدیل شدند. منحنیهای رشد کالوس در ریزنمونه های مختلف نشان دادند که شروع کالوسدهی و رشد آن دارای سرعت نسبتاً پائینی است. نتیجه گیری: درصورتیکه هدف، تولید کالوس از ریزنمونههای ساقه و برگ سرخدار باشد،2, 4- D با غلظت 3 میلیگرم در لیتر، و برای تولید کالوس از جوانه انتهایی غلظت 3 میلیگرم در لیتر NAA و چنانچه تولید گیاهچه از جوانههای سرخدار مد نظر باشد غلظت 3/0 میلیگرم NAA به عنوان پروتکلهایی مناسب، پیشنهاد میگردند. | ||
کلیدواژهها | ||
سرخدار؛ کالوس؛ تنظیم کنندههای رشد؛ کشت درون شیشهای؛ منحنی رشد کالوس | ||
مراجع | ||
1.Abbasian, Z., Zamani, S., Movahedi, S., Khaksare, G., and Sayed Tabatabaie, B.E. 2010. In vitro micropropagation of yew (Taxus baccata L.) and production of plantlets. Biotechnology. 9(1): 48- 54. (In Persian) 2.Arvin, M.J. 2002. In vitro culture of trees. Shahid Bahonar University of Kerman Publication. 279p. (In Persian) 3.Bagheri, A., Ziaratnia, M., and Hosseini, M., 2004. In vitro culture of trees. Ferdowsi University of Mashhad press. 245p. (In Persian) 4.Bagheri, A., and Saffari, M. 2011. In vitro culture of higher plants. Ferdowsi University of Mashhad press. 406p. (In Persian) 5.Berry, J.B. 1984. Rooting hormone formulations. A chance for advancement, Plant Propagator Society. 34: 486-491. 6.Burkhin, V.B., Moleva, I.R., Filonova, L.H., Grakhov, V.P., Blume, Y.B., and Bozhkov, P.V. 1996. Proliferative activity of callus cultures of Taxus baccata L. in relation to anticancer diterpenoid taxol biosynthesis. Biotechnology Letters. 18: 1309-1314. 7.Chee, P.P. 1995. Organogenesis in Taxus brevifolia Nutt. tissue cultures. Plant Cell Reports. 14: 560-565. 8.Ebady, A., and Omidvar, A. 2011. Relationship between some ecological factors and distribution of yew tree (Taxus baccata L.) in Arasbaran forests (Case study: Ilganechay and Horand regions). Iranian Journal of Forest and Poplar Research. 19(3): 327- 339. (In Persian) 9.Esmailzadeh, O., Hosseini, M., and Oladi, J. 2005. A phytosociological study of English yew (Taxus baccata L.) in Afratakhteh reserve. Journal of Pajouhesh and Sazandegi. 68: 66-76. (In Persian) 10.Esna Ashari, M., and Zokaee khosroshahi, M.R. 2013. Plant tissue culture a comprehensive guide. Bu-Ali Sina University press. 475p. (In Persian) 11.Etokawa, H., and Lee, K.H. 2002. The genus Taxus. Taylor and Francis. London, New York. 386p. 12.Ghafoori, R., Bernard, F., Abolmaali, Sh., and Mousavi, A. 2012. Improve effect of gluthanine on the induction and growth of Taxus baccata L. callus. Annals of Biological Research. 3(4): 1726- 1730. 13.Gibson, D.M., Ketcham, R.E.B., Vance, N.C., and Christen, A.A. 1993. Initiation and growth of cell lines of Taxus brevifolia Nutt. (Pacific yew). Pant Cell Reports. 12: 479- 482. 1- Somatic embryos 2- Dedifferentiation 14.Hirasuna, T.J., Pestchaner, L.J., Srinivasan, V., and Shuler, M.L. 1996. Taxol production in suspension culture of Taxus baccata L. Plant cell, Tissue and Organ Culture. 44: 95- 102. 15.Hosseini Nasr, S.M. 2015. Plant cell tissue and organ culture. Aeeizh press. 378p. (In Persian) 16.Hussain, A., Qarshi, I.A., Nazir, H., Ullah, I., Rashid, M., and Shinwari, Z. 2013. In vitro callogenesis in Taxus wallichiana Zucc. The Himalayan yew. Pakistan Journal of Botany. 45(5): 1755- 1759. (In Persian) 17.Jalili, A., and Jamzad, Z. 1999. Red data book of Iran. Research Institute of Forests and Rangelands. 748p. 18.Jaziri, M., Zhiri, A., Guo, Y., and Dupont, J. 1996. Taxus sp. Cell, tissue and organ culture as alternative sources for taxoids production: a literature survey. Plant cell, Tissue and Organ Culture. 46: 59-75. 19.Karimian, R., Lahouti, M., and Davarpanah, S.J. 2014. Effect of different concentration of 2, 4- D and Kinetin on callogenesis of Taxus brevifolia Nutt. Journal of Applied Biotechnology Reports. 1(4): 167- 170. 20.Khosrowshahli, M., and Behnamian, M. 2008. Plant cell culture. Tabriz University press. 277p. 21.Lahouti, M., Zare Hasan Abadi, M., and Ahmadian, R. 2011. Biochemistry and physiology of plant hormones. Ferdowsi University of Mashhad press. 359p. (In Persian) 22.Lesani, M.R. 1999. Yew (Taxus baccata L.). Forests and Rangelands Research Institute, 219p. (In Persian) 23.Mahdinejad, N., Fakhari, B.A., and Ghanbari, S. 2015. Effects of growth regulators on in vitro callogenesis of Taxus baccata L. Biological Forum- An International Journal. 7(1): 142-145. 24.Nasiri Madiseh, Z., Mofid, M.R., Ebrahimi, M., Khayyam Nekoei, S.M., and Khosro Shahi, M. 2009. Isolation of taxol producing endophytes fungi from Iranian yew (Taxus baccata L.). Journal of Shahrekord University of Medical Sciences. 11(4): 101-107. (In Persian) 25.Sharifi, A., Moshtaghi, N., and Bagheri, A. 2010. Practical plant tissue culture. Jahad Daneshghahi Mashhad press. 479p. (In Persian) 26.Snjezana, M., Bjedov, I., Kovac, M., Levanic, D.L., and Jejaska, S. 2002. Effect of explant source and growth regulators on in vitro callus growth of Taxus baccata L. Food Technology and Biotechnology. 40(4): 299-303. 27.Sonia, M., Rosa, M., Mirjalili, M.H., Moyano, E., Javier, P., and Bonfill, M. 2011. Production of the anticancer drug taxol in Taxus baccata L. suspension culture: A review. Process Biochemistry. 46: 23-34. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 959 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 756 |