
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 623 |
تعداد مقالات | 6,503 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,659,409 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,260,760 |
اثر نوع هورمون و غلظت محیط پایه بر جوانه زنی و پرآوری ریز نمونههای رز ساناز (Rosa chinensis var. Elvis) | ||
پژوهشهای تولید گیاهی | ||
مقاله 5، دوره 23، شماره 4، بهمن 1395، صفحه 59-74 اصل مقاله (353.65 K) | ||
نوع مقاله: پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jopp.2017.9755.1921 | ||
نویسندگان | ||
مهدی درودی* 1؛ محمدرضا واعظی کاخکی2؛ اکبر صفی پور افشار3 | ||
1دانش آموخته کارشناسی ارشد فیزیولوژی گیاهی | ||
2عضو هیات علمی دانشگاه سبزوار | ||
3عضو هیات علمی دانشگاه آزاد اسلامی نیشابور | ||
چکیده | ||
چکیده: سابقه و هدف: گل رز بهعنوان ملکه گلها از عهد باستان مورد توجه بشر بوده است. در حال حاضر یکی از محبوبترین گلهای جهان است و از لحاظ میزان تولید در صدر قرار دارد. رز ساناز یکی از انواع رزهای زینتی است که امروزه به مقدار گستردهای در فضای سبز و پارکها مورد استفاده قرار میگیرد. رز ساناز (Rosa chinensis var. Elvis) یکی از چندین گونه رز کشور ماست که پایههای آن را بهوسیله روشهای سنتی تکثیر و در بازار به فروش میرسانند. از آنجاییکه تولید آن از طریق روشهای سنتی با محدودیت زمانی و کمبود پایههای پیوندی همراه است، این تحقیق، بهدنبال تعیین شرایط بهینه ریزازدیادی گونه رز رقم ساناز از طریق روش کشت بافت میباشد. مواد و روشها: بهمنظور تکثیر این گونه، جوانههای جانبی و انتهایی شاخههای تهیه شده از نهالهای پرورش یافته در گلدان بهعنوان ریزنمونه استفاده شد. محیطهای مورد بررسی جهت پرآوری و باززایی شامل محیط MS، MS/2 و MS/4 بود. هورمونهای مورد استفاده شامل هورمون 6- بنزیلآمینوپورین (BAP) با غلظتهای 0 ، 1، 3 و 5 میلیگرم در لیتر و هورمون ایندول بوتیریک اسید (IBA) با غلظتهای 0، 1/0 ، 3/0و 5/0 میلیگرم در لیتر میباشد. آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار انجام گرفت و هر تکرار شامل 5 ریزنمونه بود. یافتهها: نتایج نشان داد که بستر MS دارای بیشترین درصد باززایی و ترکیب تیمار بستر MS تمام غلظت، همراه با 3 میلیگرم در لیتر هورمون BAP بیشترین باززایی را بهخود اختصاص داده است. بیشترین مقدار شاخهزایی در غلظت 5 میلیگرم در لیتر BAP حاصل شد. ترکیب تیمار محیط پایه MS/4 همراه با 5 میلیگرم در لیتر BAP و محیط پایه MS/4 همراه با 5/0 میلیگرم در لیترIBA و 5 میلیگرم در لیتر BAP بیشترین شاخهزایی را از خود نشان دادند. محیط MS/4 حاوی 5/0 میلیگرم در لیتر IBA و 5 میلیگرم در لیتر BAP دارای کمترین و محیط MS فاقد هورمون، بیشترین طول شاخه را داشتند. شاخههای تولیدی با موفقیت ریشهدار شدند. سپس گیاهچههای ریشهدار شده به شرایط خارج از آزمایشگاه منتقل و سازگار شدند. نتیجهگیری: با توجه به نتایج حاصل از تحقیق میتوان گفت که محیط پایهMS تمام غلظت محیط مناسبی برای گونه رز ساناز میباشد. گونه ساناز در غلظتهای نسبتاً بالای سیتوکینین (BAP) از باززایی و شاخهزایی نسبتاً بالایی برخوردار است. با افزایش میزان سیتوکینین محیط تعداد شاخههای ایجاد شده افزایش یافت اما طول شاخهها کاهش یافت. بیشترین رشد شاخهها در محیط فاقد هورمون اتفاق افتاد. | ||
کلیدواژهها | ||
رز ساناز؛ طول شاخه؛ سیتوکینین؛ پرآوری | ||
مراجع | ||
1. Arnold, N., Binns, P., Barthakur, M.R. and Clouter, D.C. 1992. A study of growth regulator and time of plantlet harvest on the in vitro multiplication rate of hardy and hybrid tea Rose. J. Hortic. Sci. 67: 6. 727-735. 2. Bar-Yousef, B., Kafkafi, U. and Bresler, E. 1995. Uptake of phosphorus by plants growing under field conditions: Theoretical model and experimental determination of its parameters. J. Soil Sci. 36: 783-800. 3. Caliskan, M., and Agaoglu, Y.S. 2009. Molecular Characterization of Rose Genotypes (Rosa sp.) based on RAPD-PCR. Field Crop. Cent. Res. Inst. 18: 1- 2. 36-42. 4. Carelli, B.P. and Echeverrigaray, S. 2002. An improved system for the in vitro propagation of rose cultivars. Sci. Hort. 92: 69–74. 5. Darroudi, H., Akbarinia, M., Safarnejad, A., Hosseini, S.M. and Hajian Shahri, M. 2015. Micropropagation of Ribes khorasanicum species by tissue culture. Iran. J. Range. Forest. Plant Breed. Genet. Res. 23: 1.65–76. (In Persian) 6. Goncalves, S., Correia, P.J., Martins-Loucao, M.A., and Romano, A. 2005. A new medium formulation for In vitro rooting of carob tree based on leaf macronutrients concentrations. Biol. Plantarum. 49: 2. 277-280. 7. Hajnajjari, H. 1994. Micropropagation. Research Institute of Forest and Rangelands Press. First press. 173p. (In Persian) 8. Hong, Z. 1996. Tissue culture of Rosa chinensis var Floribunda. Forest. Res. 7: 2. 41- 45. 9. Horn, W.A.H. 1992. Micropropagation of rose. In: Bajaj, Y.P.S. (Ed.), Biotech in Agri and Forest. 4: 320-324. 10.Jabbarzadeh, Z., and Khush-Khui, M. 2005. Factor affecting tissue culture of damask Rose (Rosa damascena Mill.). Sci. Hort. 105: 475-482. 11.Kadota, M. and Niimi, Y. 2003. Effects of cytokinin types and their concentrations on shoot proliferation and hyperhydricity on In vitro pear cultivar shoots. Plant Cell Tiss. Org. 72: 261–265. 12.Karimi, M., De Meyer, B. and Hilson, P. 2005. Modular cloning in plant cells.Trends Plant Sci. 10: 103–105. 13.Khosh-Khui, M, Honarvar, M. and Javidnia, K. 2010. The first report on in vitro culture of Musk rose. Acta Hort. 870: 213–218. 14.Khosravi, P., Jafarkhani Kermani, M., Nematzadeh, G.H. and Bihamta, M. 2007. A protocol for mass production of Rosa hybrida cv. Iceberg through in vitro propagation. Iran. J. Biotechnol. 5: 2. 100-104. (In Persian) 15.Kim, C.K., Oh, J.Y., Jee, S.O. and Chung, J.D. 2003. In vitro micropropagation of Rosa hybrida L. J. Plant Biotech. 5: 2. 115-119. 16. Mahdavi Mashaki, K., Moieni, A. and Jalali Javaran, M. 2014. Investigation on anther culture in Damask rose (Rosa damascene Mill.) and miniature rose (Rosa chinesis). Iran. J. Med. Arom. Plant. 30: 1. 84 – 100. (In Persian) 17. Mahdvian, M., Bozari, N. and Abdollahi, H. 2010. Effects of culture media and growth regulators on proliferation and rooting of a vegetative Mahlab rootstock (SL-64). Seed Plant Improv. J. 26: 1. 15-26. (In Persian) 18.Misra, P. and Chakrabarty, D. 2009. Clonal propagation of Rosa clinophylla Thory. Through axillary Bud culture. Sci. Hort. 119: 212- 216. 19.Orlikowska, T. 1984. Micropropagation of Roodknop cv. black currant. Fruit Sc. Rep. 11: 1. 5-17. 20.Osareh, M.H., Ghorbanly, M., Mamaghani, B., Ghamarizare, A. and Shahrzad, Sh. 2007. Effects of culture media and plant growth regulators on in vitro shoot proliferation of Damask rose (Rosa amascene Mill). Pajohesh and Sazandegi (Agro. Hort.). 72: 45-57. (In Persian) 21.Ruzic, D. and Lazic, T. 2006. Micro propagation as means of rapid multiplication of newly developed blackberry and black currant cultivars. Agric. Conspec. Sci. 71: 4. 149-153. 22.Salehi, H. and Khosh-Khuy, M. 2003. Callus induction and growth in Miniature Rose (Rosa chinensis Jacp. var. minima Rehd). J. Hortic. Sci. Biotech. 3: 1-2. 67-72. 23.Shirzad Khorram abadi, R. and Lotfi, N. 2003. micropropagation of Elizabeth Rose using in vitro tissue culture. Pajohesh and Sazandegi (Agro. Hort.). 15: 2. 62-67. (In Persian) 24.Sotiropoulos, T.E., Mouhtaridou, G.N., Thomidis, T.V, Tsirakoglou, K.N, Dimassi, I. and Therios, N. 2005. Effects of different N-sources on growth, nutritional status, chlorophyll content, and photosynthetic parameters of shoots of the apple rootstock MM 106 cultured In vitro. Biol. Plantarum. 49: 2. 297-299. 25.Tomas, W., Motyka, V., Strnad, M. and Schmulling, T. 2001. Regulation of plant growth by cytokinins. Sci. Hort. 6: 36-39. 26.Toriyama, K. and Hinata, K. 1995. Cell suspension and protoplast culture in rice. J. Plant Sci. 41: 283-279. 27.Yadollahi, A., Omidi, M. and Eftekhari, M. 2015. Effect of nutrient medium and concentrations of plant growth regulators on micropropagation of Rosa damascena Mill. cv. ‘Kashan’. 6th International Symposium on Production and Establishment of Micropropagated Plants. Sanremo, Italy .19-24 April. 28.Zheng-Hua, Y. 2002. Vascular tissue differentiation and pattern formation in plants. Annu. Rev. Plant Biol. 53: 183-202. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,457 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 986 |