
تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 623 |
تعداد مقالات | 6,502 |
تعداد مشاهده مقاله | 8,649,956 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,255,944 |
بهینهسازی پینهزایی و جنینزایی رویشی در دو ژنوتیپ گیاه دارویی چویل (Ferulago angulata L.) | ||
پژوهشهای تولید گیاهی | ||
مقاله 4، دوره 23، شماره 3، آبان 1395، صفحه 41-62 اصل مقاله (584.82 K) | ||
نوع مقاله: پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jopp.2017.8637.1839 | ||
نویسندگان | ||
الهام سربی1؛ علی مرادی* 2؛ اسد معصومی اصل3؛ حمیدرضا بلوچی4 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد دانشگاه یاسوج | ||
2عضو هیأت علمی دانشگاه یاسوج | ||
3استادیار دانشگاه یاسوج | ||
4دانشیار دانشگاه یاسوج | ||
چکیده | ||
سابقه و هدف: جنینزایی رویشی در راستای تولید بذر مصنوعی یکی از روشهای موثر جهت غلبه بر مشکلات کشت، تکثیر و حفاظت برخی گیاهان دارویی معرفی شده است. بدین منظور پینهزایی، جنینزایی و تعداد جنین رویشی چویل (Ferulago angulata L.) در محیط کشت موراشیگ و اسکوگ رقیق شده (1/4MS) در قالب سه آزمایش جداگانه بررسی شدند. مواد و روشها: آزمایش اول (پینهزایی) به صورت فاکتوریل دو عاملی شامل ترکیب هورمونی (در 10 ترکیب غلظت نفتالین استیک اسید (NAA) و بنزیل آمینوپورین (BAP)) و ژنوتیپ (دو ژنوتیپ کوهگل و چهل چشمه) در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در آزمایشگاه مرکزی دانشکده کشاورزی دانشگاه یاسوج انجام شد. عاملهای آزمایشی در آزمایش دوم (جنین زایی رویشی) شامل ژنوتیب، ریزنمونه و نور (نور کامل و تاریکی) بودند. در آزمایش بررسی تعداد جنین رویشی (آزمایش سوم) بعد از مشاهده علائم ظهور جنین اژدری تعداد جنینهای کروی، قلبی و اژدری تشکیل شده بر سطح پینه جنینزا در هر ژنوتیپ شمارش و با استفاده از آزمون T مقایسه شدند. یافتهها: در آزمایش پینهزایی، ژنوتیپ و ترکیب هورمونی در ترکیب با یکدیگر تأثیر زیادی بر میزان پینهزایی نشان دادند، بهطوری که برهمکنش این دو تیمار در سطح احتمال 1 درصد معنیدار شد. ریزنمونههای حاصل از ریشهچه و ساقهچه در هر دو رقم چویل در غلظت 5/1 میلیگرم در لیتر NAA و 5/1 میلیگرم در لیتر BAP تشکیل پینه دادند. در این شرایط کمترین میزان درصد پینهزایی (صفر) مربوط به تیمار شاهد (فاقد هورمون) و ترکیباتی بود که یا از غلظت بالای اکسین در مقابل غلظت سیتوکینین استفاده شد و یا یکی از هورمونها در محیط کشت حضور نداشت. در آزمایش جنینزایی رویشی (آزمایش دوم) ریزنمونه ساقهچه در کوهگل و ریز نمونه ریشهچه در چهلچشمه تشکیل جنین کروی دادند؛ نتایج این آزمایش همچنین نشان داد که ریزنمونه ساقهچه در رقم کوهگل و ریزنمونه ریشهچه در رقم چهلچشمه تحت روشنایی با کاهش غلظت اکسن پینههای سفید رنگ با بافت ترد و شکننده و دارای خاصیت جنینزایی تولید کردند. با انتقال پینههای حاوی جنین کروی به محیطی فاقد هورمون ادامه نمو جنینهای کروی به مرحله اژدری طی شد. در آزمایش بررسی تعداد جنین رویشی (آزمایش سوم) چون شرایط تشکیل پینه جنینزا یکسان بود، بنابراین فقط دو ژنوتیپ از لحاظ تعداد جنین رویشی مقایسه شد و مشاهده شد که هر دو ژنوتیپ پاسخ یکسانی را به تشکیل جنین رویشی نشان دادند. نتیجه گیری: در مجموع یافتههای این آزمایش نشان داد که نوع ریزنمونه به ژنوتیپ بستگی دارد و میتوان از طریق پینههای با بافت ترد و شکننده جنین رویشی تولید و برای تهیه بذر مصنوعی استفاده نمود. | ||
کلیدواژهها | ||
پیشجنین؛ پینهزایی؛ جنینزایی رویشی؛ چویل؛ محیط کشت | ||
مراجع | ||
adjust: auto; -webkit-text-stroke-widt1. Abdolahi, M., Moini, A., Haddadi, P., and Jalali Javaran, M. 2003. Embryogenesis of microspore isolates cultured in different cultivars of rapeseed (Brassica napus L.). Pajouhesh and Sazandegi. J. 60: 52-48. (In Persian) 2. Amiri, S., Kazemitabaar, S.K., Ranjbar, G.A., and Azadbakht, M. 2011. The effect of different carbon sources and concentrations, and growth regulators on anther culture and embryogenesis of Datura stramonium L. J. Plant Prod. 18: 2.77-92. (In Persian) 3. Ghasemian, K.H., Nazari, S., Chehregani Rod, A., and Mirzayi Asl, A. 2011. Stage of somatic embryogenesis derived from seed embryo in Vosha (Dorema ammoniacum L.). J. Cells Tiss. Sci. Res. 3: 1.21-27. 4. Goran, A., Mozafari, A.A., and Ghaderi, N. 2012. Somatic embryogenesis in ivy and leaves in varieties of "Rasha" and "Khoshnave" in grape (Vitis vinifera L.). Iranian Conference of Grapes and Raisins Uni. of Malayer. Pp: 1-6. (In Persian) 5. Huda, A.K.M.N., Rahman, M., and Bari, M.A. 2007. Effect of carbon source in alginate bead on synthetic seed germination in eggplant (Solanum melongena L.). J. Plant Sci. 2: 5.538-544. 6. Jahantab, A., Sepehri, A., Myrdeilami, G., Ghasemi-Arian, A., and Nouri, S. 2011. Aut-Ecology evaluation of medicinal plant Ferulago angulata (Schlecht) Boiss. In Central Zagros (Zone of kohgiloye). J. Plant. Sci. Res. 24: 4.1-8. (In Persian) 7. Jimenes, V. 2001. Regulation of in-vitro somatic embryogenesis with emphasis on to the role of endogenous hormones. Revista Brasileira de Fisiologia Vegetal, 13: 2. 196–223. 8. Khosravi, S., Azghandi, A.V., Hadad, R., and Mojtahedi, N. 2007. In vitro micropropagation of Lilium longiflorum. J. Agr. Res: Seed Plant. 23: 159- 168. (In Persian) 9. Kiani Abari, M., Mashayekhi, K., and Kamkar, B. 2010. Comparison of somatic embryogenesis compatibility in some organs of two breeded and native cucumber cultivars in B5 medium. Quintuplicate new View National Congress in Agriculture. Pp: 1-4. 10.Mashayekhi, K. 2007. Somatic embryogenesis in plants. Makhtoumghuly faraghi Press. 483p. 11.Merkle, S.A., Parrott, W.A., and Flinn, B.S. 1995. Morphogenetic aspects of somatic embryogenesis, in In Vitro Embryogenesis in plants. Kluwer Academic Publishers, London, Pp: 155-203. 12.Mohajer, S., Taha, R., Khorasani, A., and Yaacob, J. 2012. Induction of different types of callus and somatic embryogenesis in various explants of Sainfoin (Onobrychis sativa). Australian. J. Crop Sci. 6: 8. 1305-1313. 13.Mohammadi Nasab, A., Matlabi Azar, A.R., and Parandin, R. 2011. The effect of different concentrations of 2,4-D on somatic embryogenesis using cell culture hypocotyl thin layer of hay, Varities Karysary and Rangelander. J. Plant. Bio. 3: 7.73-84. 14.Mortazavi, R. 2013. Determination of the best component of hormone for embryo plant, micropropagation and callus induction in herbal plant chavil (Ferulago angulata). Thesis of M.Sc. Yasouj Uni. 70p. (In Persian) 15.Movahedi Dehnavi, M. 2011. Effect of seed dormancy breaking treatments on germination and vigor of plants Chavilan, Iranian caraway, lemon balm, cumin and coneflower. The final report of the research Project, Yasouj Uni. 69p. (In Persian) 16.Suhasini, K., Sagare, A.P., and Krishnamurthy, K.V. 1994. Direct Somatic embryogenesis from mature embryo axes in chickpea (Cicer arietinum L.). J. Plant Sci. 102: 189-194. 17.Takeda, T., Inose, H., and Matsuoda, H. 2003. Stimulation of somatic embryogenesis in carrot cells by the addition of the calcium. J. Biochem. Eng. J. 14: 2. 143-148. (In Persian) 18.Taran, M., Ghasempour, H.R., and Shirinpour, E. 2010. Antimicrobial activity of essential oils of Ferulago angulata subsp. Carduchorum. Jundishapur J. Microbiol. 3: 1. 10-21. 19.Tavakoli, M., Mashayekhi, K., and Ghaderi-Far, F. 2014. The effect of molybdenum in B5 medium containing nitrate and ammonium on somatic embryogenesis of carrot petiole. J. Plant Prod. Res. 21: 3. 117-134. (In Persian) 20.Theiler, H., and Kagi, A. 1991. Cloning in vitro and somatic embryogenesis in Foeniculum vulgare (fennel) of zeta fino and zefa tard. J. Acta Hort. 300: 1. 287-291. 21.Trigiano, R., and Gray, D. 2000. Plant tissue culture concepts and laboratory exercises. 2nd Edition, CRC Press, Boca Raton, 430p. 22.Werbrouck, S., Debergh, U., and Debergh, P. 1994. Plant cell culture: a practical approach. Socond edition Oxford university press, Oxford, England. Pp: 127-145. 23.Yanjie, C.H. 2003. Callus induction and plant regeneration from leaf explants of tobacco. J. Huazhong Agri. Uni. 2: 1-3. 24.Yan-xia, W., Xing-fen, W., Zhi-ying, M., Gui-yin, Z., and Gai-ying, H. 2006. Somatic embryogenesis and plant regeneration from two recalcitrant genotypes of Gossypium hirsutum L. Agricultural Sciences in China. 5: 5.323-329. 25.Zarinpanje, N., Oladzade Abassabadi, A., and Omidi, M. 2012. Effect of plant growth regulators and vitamin on callus induction, somatic embryogenesis and plantlet production of medicinal plant Aloe vera (Aloe vera L.). Iranian J. Rangeland and Forest Plant Breeding and Genetic Research. 20: 2. 191-181. (In Persian) | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,419 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 842 |