دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان

 آمار

تعداد نشریات13
تعداد شماره‌ها650
تعداد مقالات6,788
تعداد مشاهده مقاله9,564,439
تعداد دریافت فایل اصل مقاله8,999,955
قربانی خطیر, قاسم, آقاجانی, محمدعلی, ذوالفقاری, امیر, ربانی نسب, حجت اله. (1402). حساسیت جدایه‌هایPenicillium digitatum، عامل کپک سبز مرکبات به قارچکش‌های ایمازالیل، فلودیوکسونیل، پیریمتانیل، آزوکسی استروبین و تیابندازول در شمال ایران. , 15(4), 107-126. doi: 10.22069/fppj.2024.22095.1795
قاسم قربانی خطیر; محمدعلی آقاجانی; امیر ذوالفقاری; حجت اله ربانی نسب. "حساسیت جدایه‌هایPenicillium digitatum، عامل کپک سبز مرکبات به قارچکش‌های ایمازالیل، فلودیوکسونیل، پیریمتانیل، آزوکسی استروبین و تیابندازول در شمال ایران". , 15, 4, 1402, 107-126. doi: 10.22069/fppj.2024.22095.1795
قربانی خطیر, قاسم, آقاجانی, محمدعلی, ذوالفقاری, امیر, ربانی نسب, حجت اله. (1402). 'حساسیت جدایه‌هایPenicillium digitatum، عامل کپک سبز مرکبات به قارچکش‌های ایمازالیل، فلودیوکسونیل، پیریمتانیل، آزوکسی استروبین و تیابندازول در شمال ایران', , 15(4), pp. 107-126. doi: 10.22069/fppj.2024.22095.1795
قربانی خطیر, قاسم, آقاجانی, محمدعلی, ذوالفقاری, امیر, ربانی نسب, حجت اله. حساسیت جدایه‌هایPenicillium digitatum، عامل کپک سبز مرکبات به قارچکش‌های ایمازالیل، فلودیوکسونیل، پیریمتانیل، آزوکسی استروبین و تیابندازول در شمال ایران. , 1402; 15(4): 107-126. doi: 10.22069/fppj.2024.22095.1795

حساسیت جدایه‌هایPenicillium digitatum، عامل کپک سبز مرکبات به قارچکش‌های ایمازالیل، فلودیوکسونیل، پیریمتانیل، آزوکسی استروبین و تیابندازول در شمال ایران

نشریه فرآوری و نگهداری مواد غذایی
دوره 15، شماره 4، دی 1402، صفحه 107-126    اصل مقاله (1.26 M)
نوع مقاله: مقاله کامل علمی پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/fppj.2024.22095.1795
نویسندگان
قاسم قربانی خطیر1؛ محمدعلی آقاجانی* 2؛ امیر ذوالفقاری1؛ حجت اله ربانی نسب2
1گروه کشاورزی، واحد گرگان، دانشگاه آزاد اسلامی، گرگان، ایران
2بخش تحقیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
چکیده
کپک سبز شایع‌ترین بیماری پس از برداشت مرکبات است که توسط قارچ Penicillium digitatum ایجاد می‌گردد. به منظور ارزیابی کارایی قارچ‌کش‌های پس از برداشت مرکبات از نظر مهار رشد میسلیوم و جوانه‌زنی کنیدی، 150 نمونه به صورت تصادفی از انبارها و باغ‌های سه سایت شرقی(گرگان)، مرکزی(ساری و قائم شهر) و غربی(رامسر و تنکابن)، نمونه‌برداری و 15 جدایه قارچ از آنها استخراج شد. نتایج بررسی‌های ازمایشگاهی نشان داد که کمترین تا بیشترین مقادیر میانگین EC50 برای رشد میسلیوم قارچ به ترتیب مربوط به قارچ‌کش‌های آزوکسی‌استروبین، ایمازالیل، فلودیوکسونیل، پیریمتانیل و تیابندازول با مقادیر 0.045، 0.065، 0.08، 0.34 و 0.55 میکروگرم ‌بر ‌میلی‌لیتر بود و برای مهار جوانه‌زنی کنیدی، به ترتیب از کمترین تا بیشترین مقادیر میانگین EC50، مربوط به قارچ‌کش آزوکسی‌استروبین، ایمازالیل، فلودیوکسونیل، تیابندازول و پیری‌متانیل با مقادیر 0.072، 0.117، 0.155، 0.731 و 0.774 میکروگرم ‌بر ‌میلی‌لیتر بود. همه جدایه‌ها به قارچ‌کش آزوکسی استروبین حساس بودند و اما مقادیر EC50 خارج از محدوده پایه بود. همچنین همه جدایه‌ها به قارچ‌کش فلودیوکسونیل حساس بودند و برخی از جدایه‌ها دارای مقادیر EC50 خارج از محدوده پایه بود. مقادیر EC50 تمام جدایه‌ها نسبت به قارچ‌کش ایمازالیل در محدوده حساس قرار گرفت و در رابطه با قارچ‌کش پیریمتانیل، همه جدایه‌ها حساس و برخی از جدایه‌ها خارج از محدوده پایه بود. چهار جدایه نسبت به قارچ‌کش تیابندازول مقاوم و11 جدایه در محدوده حساس قرار گرفتند.

کلیدواژه‌ها
میوه پرتقال؛ Penicillium digitatum؛ کپک سبز؛ EC50؛ پایش مقاومت
مراجع
  1. Aquino, S., Schirra, M., Palma, A., & Liguori, R. (2008, November). Effectiveness of fludioxonil against Penicillium decay in citrus fruit. In III International Conference Postharvest Unlimited 2008 858 (pp. 357-362).
  2. Arras, G. (1996). Mode of action of an isolate of Candida famata in biological control of Penicillium digitatum in orange fruits. Postharvest Biology and Technology, 8(3): 191-198.
  3. Ballester, A. R., Lafuente, M. T., & González-Candelas, L. (2006). Spatial study of antioxidant enzymes, peroxidase and phenylalanine ammonia-lyase in the citrus fruit–Penicillium digitatum interaction. Postharvest Biology and Technology, 39(2), 115-124.
  4. H, Saadi.B, Boudyach.E and Benaoumar.A, 2009. Sensitivity of Penicillium digitatum and P. italicum to Imazalil and Thiabendazole in Morocco. Plant Pathology Journal, 8: 152-158.
  5. Brent, K. J. 1988. Monitoring for fungicide resistance. Pages 9-11 in: Fungicide resistance in North America. C. J. Delp, ed. American Phytopathological Society Press, St. Paul, MN.
  6. Bus, V. G. 1992. ED50 levels of Penicillium digitatum and P. italicum with reduced sensitivity to thiabendazole, benomyl, and imazalil. Postharv. Biol. Technol. 1:305-315
  7. California Agricultural Resource Directory, 2005. California Department of Food and Agriculture. Pages 179 (online publication: http://www.cdfa.ca.gov/card/pdfs/ agresdirentire05 .pdf).
  8. Crous PW, Gams W, Stalpers JA, Robert V and Stegehuis G, 2004. MycoBank: an online initiative to launch mycology into the 21st century. Studies in Mycology 50: 19-22.
  9. Dan, F. E. N. G., Xue-peng, S. U. N., Li-ying, J. I. A. N. G., Jian-min, C. H. E. N., & Hong-ye, L. I. (2011). Resistance level and mechanism of Penicillium digitatum to imazalil and carbendazim in Quzhou, Zhejiang. Chinese Journal of Pesticide Science, 13(4), 341-346.
  10. Del Río, J.A., Arcas, M.C., Benavente-García, O., & Ortuño, A. (1998). Citrus polymethoxylated flavones can confer resistance against Phytophthora citrophthora, Penicillium digitatum, and Geotrichum species. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 46(10), 4423-4428.
  11. Eckert, J. W., & Wild, B. L. (1983). Problems of fungicide resistance in Penicillium rot of citrus fruits. In Pest Resistance to Pesticides (pp. 525-556). Boston, MA: Springer US.
  12. Eckert, J.W., Brown, G.E., 1986. Evaluation of postharvest fungicide treatments for citrusfruits. In: Hickey, K.D. (Ed.), Methods for Evaluating Pesticides for Control of PlantPathogens. APS Press, St Paul, MN, USA, pp. 92–97.
  13. Eckert, J.W., Eaks, I.L., 1989. Postharvest disorders and diseases of citrus fruits. In: Reuter, W., Calavan, E.C., Carman, G.E. (Eds.), The Citrus Industry. DANR. University of California Press, Berkeley, CA, USA, pp. 179–260.
  14. Eckert, J.W., Ratnayake, M., 1994. Role of volatile compounds from wounded oranges ininduction of germination of Penicillium digitatum conidia. Phytopathology, 84: 746–750.
  15. Erasmus, A., Lennox, C.L., Jordaan, H., Smilanick, J.L., Lesar, K., and Fourie, P.H. 2011. Imazalil residue loading and green mould control in citrus packhouses. Postharvest Biology and Technology, 62: 193–2
  16. Erasmus, A., Lennox, C.L., Korsten, L., Lesar, K., Fourie, P.H., 2015. Imazalil resistance in Penicillium digitatum and P. italicum causing citrus postharvest green and blue mould: impact and options. Postharvest Biology and Technology, 107: 66–76.
  17. Errampalli, D. 2003. Effect of fludioxonil on germination and growth of Penicillium expansum and decay in apple cvs. Empire and Gala. Crop Prot. 23:822-827.
  18. Fatahi Moghadam J., Golmohammadi M. 2012. A review of the effective activities in reducing the waste of citrus fruit harvest and after harvest. Citrus and Subtropical Fruits Research Institute, Iran. Extension booklet.
  19. Kanetis, L., Förster, H. and Adaskaveg, J.E. 2008. Baseline sensitivities for new postharvest fungicides against Penicillium spp. on citrus and multiple resistance evaluations in Penicillium digitatum. Plant Disease, 92: 301–310.
  20. Kanetis, L., Förster, H. and Adaskaveg, J.E. 2010. Determination of natural resistance frequencies in Penicillium digitatum using a new air-sampling method and characterization of fludioxonil- and pyrimethanil-resistant isolates. Phytopathology 100: 738–746.
  21. Kanetis, L., Förster, H., Adaskaveg, J.E., 2007. Comparative efficacy of the new postharvest fungicides Azoxystrobin, Fludioxonil, and Pyrimethanil for managing citrus green mold. Plant Disease 91: 1502–1511
  22. Kendall Brent, & Hollomon, D. W. (1998). Fungicide resistance: the assessment of risk (Vol. 2). Brussels, Belgium: Global Crop Protection Federation.
  23. Kinay, P., Mansour, M.F., Mlikota-Gabler, F., Margosan, D.A., Smilanick, J.L. 2007. Charac­terization of fungicide-resistant isolates of Penicillium digitatum collected in California. Crop Protection 26: 647–656.
  24. Louw, J. P. & Korsten, L. 2015. Pathogenicity and host susceptibility of Penicillium spp. on citrus. Plant Disease 99(1): 21–30.
  25. Pandey, D. K., Tripathi, N. N., Tripathi, R. D., and Dixit, S. N. 1982. Fungitoxic and phytotoxic properties of the essential oil of Hyptissuaveolens/Fungitoxische und phytotoxischeEigenschaften des ätherischenÖis von Hyptissuaveolens. Zeitschrift für Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz/Journal of Plant Diseases and Protection: 344-349.
  26. Patil,S. R., Parthiban, V.K., Sekar, G. R., and Baviskar, S. 2017: Epidemiology and cultural characteristics ofPenicillium digitatum causing green mould of citrus. Ecology, Environment and Conservation Paper 23 (4): 2148-2155.
  27. Pelser, P., du, T., 1977. Postharvest handling of South African citrus fruit. Proc. Int. Soc. Citriculture 1: 244–249.
  28. Pérez, E., Blanco, O., Berreta, C., Dol, I., Lado, J., 2011. Imazalil concentration for in vitro monitoring of imazalil resistant isolates of Penicillium digitatumin citrus packinghouses. Postharvest Biology and Technology 60, 258–262.
  29. Pitt, J. I., & Hocking, A. D. (2009). Fungi and food spoilage (Vol. 519, p. 388). New York: Springer.
  30. Ramirez, C. 1982. Manual and Atlas of the Penicillia. Elsevier Biomedical Press, Amsterdam, 482 pp.
  31. Sánchez-Torres, P., Tuset, J., 2011. Molecular insights into fungicide resistance in sensitive and resistant Penicillium digitatumstrains infecting citrus. Postharvest Biology and Technology59: 159–165.
  32. Samson, R. A., Hoekstra, E. S., & Frisvad, J. C. (2004). Introduction to food-and airborne fungi (No. Ed. 7). Centraalbureau voor Schimmelcultures (CBS).
  33. Sholberg, P. L., Bedford, K., and Stokes, S. 2005. Sensitivity of Penicillium spp. and Botrytis cinerea to pyrimethanil and its control of blue and gray mold of stored apples. CropProtection 24:127-134.
  34. Smilanick, J. L., Mansour, M. F., Mlikota Gabler, F., and Goodwine, W. R. Erasmus, A., Lennox. 2006 The effectiveness of pyrimethanil to inhibit germination of Penicillium digitatum and to control citrus green mold after harvest. Postharvest Biology and Technology42:75-85.
  35. Smilanick, J.L., Mansour, M.F., Gabler, F.M., Sorenson, D., 2008. Control of citrus postharvest green mold and sour rot by potassium sorbate combined with heat and fungicides. Postharvest Biology and Technology 47: 226–238
  36. Smilanick, J.L., Mansour, M.F., Mlikota-Gabler, F., andGoodwine, W.R. 2006. The effectiveness of pyrimethanil to inhibit germination of Penicillium digitatumand to control citrus green mold after harvest. Postharvest Biology and Technology 42: 75–85.
  37. Tuset, J. J. (1987). Podredumbres de los frutos cítricos. Conselleria d'Agricultura i Pesca/IVIA.
  38. Wild, B.L. 1994. Differential sensitivity of citrus green mould isolates (Penicillium digitatumSacc.) to the fungicide imazalil. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science 22: 167–171.
  39. Wolfe, M. S. (1982). Dynamics of the pathogen population in relation to fungicide resistance. Fungicide resistance in crop protection, 139-148.
  40. Zhang, Z., Zhu, Z., andMa, Z., Li, H. 2009. Molecular mechanism of azoxystrobin resistance in Penicillium digitatumUV mutants and a PCR-based assay for detection of azoxystrobin-resistant strains in packing- or store-house isolates. Int. J. Food Microbiol. 131, 157–161.
  41. Zhu, J. W., Xie, Q. Y., and Li, H. Y. 2006. Occurrence of imazalil-resistant biotype of Penicillium digitatum in China and the resistant molecular mechanism. Journal of Zhejiang University-Science 7(Suppl 2): 362-365.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 226
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 272


سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب