آمار
| تعداد نشریات | 13 |
| تعداد شماره‌ها | 636 |
| تعداد مقالات | 6,653 |
| تعداد مشاهده مقاله | 9,072,970 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,557,000 |
افزایش انبوه پایه درون شیشه‌ایی میروبالانC 29 (Prunus cerasifera L.) : یک پایه‌ی رویشی برای میوه-های هسته دار | ||
| پژوهش‌های تولید گیاهی | ||
| مقاله 10، دوره 26، شماره 3، آبان 1398، صفحه 167-177 اصل مقاله (539.87 K) | ||
| نوع مقاله: پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22069/jopp.2019.15507.2394 | ||
| نویسندگان | ||
| زهرا شعبانی* 1؛ بهرام عابدی2؛ ابراهیم گنجی مقدم3؛ علی تهرانی فر4 | ||
| 1دانشجو | ||
| 2عضو هییت علمی دانشکده کشاورزی. دانشگاه فردوسی | ||
| 3عضو هییت علمی. بخش تحقیقات علوم زراعی و باغی،مرکز تحقیات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی،مشهد | ||
| 4عضو هییت علمی دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد | ||
| چکیده | ||
| سابقه و هدف: هدف اصلی این مطالعه بررسی تکنیک‌هایی برای افزایش درون شیشه‌ایی پایه میروبالانC 29 (یک پایه برای درختان هسته‌دار) بود. ازدیاد درختان میوه در شرایط درون شیشه‌ایی یک روش قابل دسترس برای افزایش انبوه است. تکثیر درون شیشه‌ای گیاهان چوبی نسبت به گیاهان علفی دارای مشکلات بیش‌تری بوده و گیاهان چوبی از نظر باززایی درون شیشه‌ای شاخساره‌های نابجا از ریز نمونه و همچنین از نظر ریشه‌زایی درون شیشه‌ای سرسخت هستند، از این رو گزینش محیط‌های کشت مناسب‌تر برای انگیزش باززایی شاخساره از ریز نمونه‌ها، پرآوری و ریشه‌زایی برای توسعه‌ی سیستم ریزازدیادی در درختان میوه ضروری است. مواد و روش‌ها: این آزمایش به منظور ارزیابی بهترین محیط کشت و تنظیم کننده رشد برای ریزازدیادی پایه میروبالانC 29 به صورت آزمایش فاکتوریل بر پایه طرح کاملا تصادفی با چهار تکرار و هر تکرار شامل پنج نمونه در مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی انجام شد. به منظور پرآوری، محیط کشت در دو سطح (MS و QL ) و غلظت بنزیل آمینوپورین و تیدیازرون در پنج سطح (0، 1، 2، 3 و 4 میلی‌گرم در لیتر) در مرحله ریشه‌زایی از دو محیط کشت QL و DKW و تنظیم کننده رشد نفتالین استیک اسید در غلظت‌های (0، 1، 2 و3 میلی گرم در لیتر) و در مرحله سازگاری از بستر کشت، کوکوپیت و پرلایت (50 : 50 حجمی) استفاده شد. در مرحله شاخه‌زایی بعد از سه بار واکشت به فواصل هر سه هفته تعداد گیاهچه، طول گیاهچه و تعداد برگ و در مرحله ریشه‌زایی پس از شش هفته، صفات تعداد و طول ریشه، تعداد برگ، طول ساقه گیاهچه و درصد ریشه‌زایی مورد ارزیابی قرار گرفت. یافته‌ها: نتایج نشان داد بیشترین ضریب تکثیر شاخه با 41/3 در محیط کشت MS حاوی دو میلی‌گرم در لیتر بنزیل آمینو پورین به دست آمد و همچنین بالاترین طول گیاهچه 5/2، 33/2 و 29/2 سانتی‌متر، به ترتیب در سه غلظت یک، دو و سه میلی‌گرم در لیتر بنزیل آمینو پورین مشاهده شد. بیشترین درصد ریشه‌زایی (100 درصد) و طول ریشه 12/2 سانتی‌متر در محیط DKW به ترتیب در غلظت یک و سه میلی‌گرم در لیتر NAA ، ثبت شد. سازگاری گیاهچه‌ها با استفاده از سیستم مه افشانی، در گلخانه با موفقیت انجام شد که بیشترین درصد بقای گیاهچه (50 درصد) در محیط DKW با یک میلی‌گرم در لیتر NAAو در بستر کوکوپیت و پرلایت (50: 50 حجمی) به دست آمد. نتیجه‌گیری: ترکیب محیط کشت و غلظت تنظیم کننده رشد برروی پرآوری و ازدیاد پایه‌های هسته‌دار تاثیر دارد. در این آزمایش غلظت بهینه بنزیل آمینو پورین و نفتالین استیک اسید برای پرآوری و ریشه‌زایی میروبالانC 29، به ترتیب دو و یک میلی‌گرم در لیتر بود. لازم به ذکر است غلظت بالاتر از دو میلی‌گرم در لیتر بنزیل آمینو پورین و نفتالین استیک اسید برای این گیاه توصیه نمی-شود. معمولا تولید ریشه تحت تاثیر سنتز، متابولیسم و حرکت اکسین در گیاهچه است بنابراین سازگاری گیاهچه‌ها به طور مستقیم با کیفیت ریشه و بیشترین ضریب ریشه‌زایی در ارتباط است. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| پرآوری ؛ تنظیم کننده رشد؛ محیط کشت؛ ریشه زایی | ||
| مراجع | ||
|
1.Andreu, P. and Marin, J.A. 2005. In vitro culture establishment and multiplication of the prunus. Acta Hort. Pp: 15-20.
2.Channuntapipat, Ch., Sedgley, M. and Collins, G. 2003. Micropropagation of almond cultivars Nonpariel and Ne Plus Ultra and the hybrid rootstock Titan × Nemagard. Sci. Hort. 98: 473-484. 3.Daneshvar Hossini, A., Ganji Moghadam, E. and Anahid, S. 2010. Effects of media cultures and plant growth regulators in micropropagation of Gisela6 rootstock. A. Bio. Res. 1: 135-141. (In Persian)
4.Demiral, S. and Ulger, S.A. 2008. Research on propagation of Gisela 5 cherry rootstock by tissue culture. Akd. Uni. Zir Fac. 21: 117-121.
5.Huang, V.J. 2003. In vitro propagation of dwarf cherry rootstock Gisela. J. Nat. Sci. 26: 2. 161-164.
6.Izad Panah, Sh. 2004. The effects of age and genotype on the way propagation Sweet Cherry (Prunus avium) in vitro. Nat. Sou. 64: 63-70. (In Persian)
7.Ganji Moghadam, E. and Abdollahzadeh, A. 2009. Guide fruit trees rootstock (Translate). AREEO. Pp: 155-184. (Edited book). (In Persian)
8.Ganji Moghadam, E., Bolandi, H.R.and Anahid, S. 2008. In vitro multiplication of four genotypes dwarf selected Mahalab. Res. Deve. Nat. Res. 79: 55-61. (In Persian)
9.Kamali, K., Majidi, A. and Zarghami,R. 2002. Determine the most suitable culture medium and growth conditions micropropagation of vegatative GF677 (hyberid Paech × Almound) rootstock.J. Sap. Seed. 17: 38-47. (In Persian)
10.Mahdavyan, M., Bozari, N. and Abdollahi, H. 2010. Effect of media and plant growth regulators on proliferation and rooting Mahaleb (Sent losi 64)of vegetative rootstock. J. Sap. Seed.1: 15-26. (In Persian)
11.Mohamed, A. 2012. Establishment of regeneration system for Taif peach (Prunus persica L. Batsch) cultivar (Balady cultivar) in Taif, KSA. J. Am. Sci. 8: 4. 232-239.
12.Movsiuw, A. 2011. In vitro propagation of virus-free Myrobalan 29C rootstock. GRI. 7349: 101-102.
13.Perez-Tornero, O. and Lopez, J.M. 2000. Effect of basal media and growth regulators on the in vitro propagation of apricot (prunus armenica L.) cv. Cannino. J. Hort. Sci. Bio. 75: 283-286. 14.Plopa, C., Dutu, N., Isac, V., Mazilu, C. and Ancu, S. 2010. Factors influencinrg in Vitro propagation of Myrobolan dwarf Plum root stock. ISHS. Acta. Hor. 966: 221-223.
15.Punchia, G. 1992. Research on in vitro propagation of Prunus laurecerasus cv. Otto Layken. Aca. Hort. 300: 177-186.
16.Ruzic, D., Saric, M., Cerovic, R. and Culafic, L. 2001. Change in macro element content of the media and in sweet cherry in mil GM 9 shoots during in vitro culture. J. Hort. Sci. Bio.78: 295-299.
17.Ruzic, D.V. and Vajovic, T.I. 2013. The effect of cytoknins types and their concentration on in vitro multiplication of sweet cherry. Hort. Sci. 35: 12-21.
18.Sedlak, J. and Paprstein, F. 2003. Influence of growth regulator on in vitro propagation of pyrus communis c.v. koporeka. Acta. Hort. 616: 379-382.
19.Shekafandeh, A. and Qasemi, M. 2008. Effects of BA and TDZ on bud growth and somatic embryogenesis of immature almond (Prunus dulcis L.) blooming late shahrody varieties 7. J. Hort. Sci.2: 148-152. (In Persian)
20.Soleymanpor, A. and Bozari, N. 2012. Effect of media and plant growth regulators in micro propagation Mahaleb (SL-64) of vegitative rootstock. STGI. 12: 1-5. 9. (In Persian)
21.Tatari, M. and Mosavi, A. 2013. Evaluation in vitro culture of vegetative Tetra, Nemagard and GF677 rootstock. Bu. Agric. 3: 103-115. (In Persian)
22.Yadollahi, A., Nazari Moghadam Aghaee, R. and Moeeni, A. 2009. Effect composition BAP and NAA on prolifiration Gisela rootstock. STGI.3: 1-5. (In Persian)
23.Yang, H.Y. and Schmitid, H. 1994. Influnece of different auxin on in vitro sweet cherry cultivares. Agric. Sci.59: 1. 45-47.
24.Ying-Ning, Z. 2010. Micropropagation of chinese plum (Prunus salicina Lindl.) using mature stem segments. Not. Bot. Hort. Agric. Clu. 38: 3. 214-218.
25.Zolfaghari Nasab, R., Khosroshahi, M., Gergoryan, V. and Matlabi Azar, A. 2005. Study in vitro natural hybrid Apricot × Plum. J. Hort. Sci. Tec. I.5: 81-92. (In Persian) | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 599 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 408 |
||
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب